Диагностика и профилактика инфекционной анемии цыплят в условиях промышленного птицеводческого предприятия мясного направления

Работа выполнена в отделе вирусологии и опухолевых болезней птиц во
«Всероссийском научно-исследовательском ветеринарном институте» – филиале
Федерального государственного бюджетного научного учреждения Федерального
научного центра «Всероссийский научно-исследовательский и технологический
институт птицеводства» Российской академии наук (ВНИВИП) в 2011-2014 годах.
2.1. Материалы и методы
Животные: СПФ-цыплята суточного возраста, 4-5-суточные СПФ-куриные
эмбрионы, цыплята-бройлеры кросса «Росс-308», беспородные цыплята из
фермерских хозяйств.
Методы лабораторных исследований: иммуноферментный анализ (ИФА);
реакция задержки гемагглютинации (РЗГА); биохимическое исследование крови;
заражение куриных эмбрионов в желточный мешок; полимеразно-цепная реакция
(ПЦР); геномное секвенирование; электронно-микроскопическое исследование;
постановка биопробы.
Иммуноферментный анализ проводили в соответствии с наставлениями по
проведению ИФА с использованием наборов и компьютерной программы
«BioChek». Титры антител указывали в обратных значениях.
Реакциюзадержки(торможения)гемагглютинацииставилипо
общепринятой методике микропланшетным методом с использованием антигена
вируса ньюкаслской болезни (ВНИВИП).
Оборудование и приборы: ИФА – промывочное устройство (шланг и
гребенка-дозатор на 12 лунок), полуавтоматические 1-канальные и 8-канальные
пипетки различного объема, микропланшетный ридер SUNRISE (Tecan Austria
GmbH, Австрия), фильтр с длиной волны 405 нм; компьютер с программой
BioChek; получение ВСМ – гомогенизатор ULTRA-TURRAX® T-25 digital.
Заражениекуриных эмбрионов.4-5-сут.СПФ-куриных эмбрионов
заражали в желточный мешок вируссодержащим материалом (ВСМ). Объем
инокулята составлял 0,2 см3.
Полимеразно-цепную реакцию ставили с использованием многоканального
термоциклера МС2 «Терцик», детектирующего термоциклера ДТ-322, системыПЦР
с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени CFX96 TouchTM, системы
анализа последовательности молекул ДНК Ion (PGM). Выделение ДНК вируса ИАЦ
осуществляли по общепринятой методике с использованием лицензированных
коммерческихнаборов(«ДНК-сорбВ»,ФБУНЦНИИ Эпидемиологии
Роспотребнадзора, Россия).
Геномное секвенирование проводили с использованием автоматического
секвенатора MegaBACE1000 в соответствии с рекомендациями производителя с
использованием коммерческих наборов «DYEnamic ET terminator kit».
Гематологическое исследование крови цыплят проводили по общепринятой
методике в ФГБУ «Калининградская межобластная ветеринарная лаборатория»
(Калининград).
Электронно-микроскопическое исследование ВСМ проводили методом
негативного контрастирования в ФГБУ «Научно-исследовательский институт
гриппа им. А.А. Смородинцева» Министерства здравоохранения РФ.
Постановка биопробы. Использовали беспородных цыплят, не имеющих
антителкВАЦ.Суточнымцыплятамвнутрибрюшинноиннокулировали
вируссодержащую суспензию, полученную из печени клинически больных цыплят-
бройлеров, в объеме 0,2 см3.
Статистическаяобработкарезультатовисследованийпроводили
общепринятыми методами оценки дисперсии, стандартного отклонения и
доверительногоинтервалаварьирующихпеременных,устанавливали
количественные показатели связи зависимых переменных в виде коэффициентов
корреляции или коэффициентов регрессионных уравнений. Для вычислений
применяли компьютерную программу Microsoft Excel.

2.2.Результаты собственных исследований
2.2.1. Общая характеристика птицеводческого хозяйства. Основные
зооветеринарные аспекты выращивания цыплят-бройлеров
ООО «ТПК «Балтптицепром» с полным технологическим циклом основана в
1982 году на территории Калининградской области. Валовое производство мяса
птицы составляет более 19 тыс. тонн в год в убойном весе. Выход мяса и
субпродуктов составляет 82%. Предприятие инкубирует более 14,5 млн. яйца в год.
Поставщиками инкубационного яйца являются крупные предприятия Европы.
Процент вывода составляет 80-83%. В цехе переработки в год выпускается более
3,0 тыс. тонн готовой продукции. Хозяйство специализируется на выращивании
цыплят-бройлеров кросса «РОСС-308». На откорме ежедневно содержится около
1,3 млн. голов цыплят, что составляет более 13 млн. голов в год.
Цыплята-бройлеры содержатся в соответствии с рекомендациями по
выращиваниюкроссаиутвержденнойтехнологией.Дляобеспечения
эпизоотологическогоблагополучиянаптицефабрикеразработанкомплекс
ветеринарно-санитарных, лечебно-профилактических и противоэпизоотических
мероприятий, которые проводятся в соответствии с утвержденными планами,
графиками выполнения работ. Цыплят иммунизируют против НБ, ИББ, ИБК с
последующим контролем уровня поствакцинальных антител с использованием
серологических методов исследований.
2.2.2. Причины возникновения болезни в птицеводческом хозяйстве. История
течения болезни
Впервые клинические и патологоанатомические признаки ИАЦ в хозяйстве
были отмечены в 2008 году на цыплятах, завезенных из Нидерландов компанией
«Хаанстра», после ввоза инкубационного яйца из Испании компанией «Мигель
Авикола», полученного от невакцинированного против ИАЦ родительского
поголовья.Клиническаякартинаболезнибылапредставленаснижением
потребления корма, живой массы, анемией видимых слизистых оболочек,
дерматитами и кровоизлияниями в области крыльев и брюшной стенки,
увеличениемпадежацыплятначинаяс21-суточноговозраста.При
патологоанатомическом вскрытии выявляли атрофию тимуса, увеличение печени,
мраморность почек, атрофию фабрициевой сумки.
2.2.3. Клинические признаки ИАЦ у цыплят-бройлеров
Первоначально проявление клинических признаков отмечалось в 14-29-
суточном возрасте. Больные цыплята были малоподвижны, плохо поедали корм.
Отмечались отставание в росте и развитии, бледность гребешка, видимых
слизистых оболочек, кожных покровов, дерматиты в области крыльев и брюшной
стенки. Наблюдалось резкое расслоение цыплят в течение 2-3-суток. На
неблагополучных по ИАЦ партиях наблюдалось снижение сохранности, которая в
среднем составляла 89,5±3,9%. Средняя сохранность цыплят благополучных по
ИАЦ партий была выше на 7,7% и составляла 97,2±0,5%.
В 2011-2014гг. повышение падежа цыплят-бройлеров с признаками ИАЦ
отмечалось в возрасте 17-29 суток, т.е. наблюдался 1 пик смертности с резким
увеличением падежа в течение 2-4 суток. В 2015-2016гг. динамика падежа цыплят-
бройлеров изменилась, а именно стали выявлять 2 пика смертности – в возрасте 14-
21 суток и в возрасте 26-36 суток. Первый пик смертности обусловлен
трансовариальной передачей ВАЦ, второй – горизонтальной или полевым
заражением. Динамика падежа цыплят представлена на рисунке 1.

Динамика падежа цыплят-бройлеров
Пало, голов
1 3 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 31 33 35 37 39
Возраст цыплят-бройлеров, суток
Средний уровень падежа в неблагополучных по ИАЦ корпусах
Средний уровень падежа в благополучных по ИАЦ корпусах

Рисунок1-Сравнительнаяхарактеристикадинамикипадежацыплят-бройлеровв
неблагополучных и благополучных по ИАЦ корпусах
На рисунке 1 показано, что динамика падежа цыплят-бройлеров в
неблагополучных по ИАЦ корпусах характеризуется 2-мя пиками смертности в
возрасте 14-21 и 26-36 суток. Динамика падежа цыплят-бройлеров в благополучных
по ИАЦ корпусах характеризуется низким уровнем смертности на протяжении
всего периода выращивания.
2.2.4. Патологоанатомические изменения
Наиболее часто выявляли следующие патологоанатомические изменения:
диффузные кровоизлияния в области крыльев, гангренозные дерматиты в области
крыльев (синдром «синего крыла»), наличие подкожных инфильтратов в области
брюшной стенки и нижних конечностей, цвет которых варьировал от соломенно-
желтого до буро-зеленоватого, некроз кожи пальцев. У некоторых цыплят
наблюдалось скоплениев брюшнойполости студневидного инфильтрата
соломенно-желтого цвета, диффузные кровоизлияния в слизистой оболочке
железистого желудка. У цыплят 3-5-суточного возраста иногда выявляли
геморрагии в фабрициевой сумке. У цыплят раннего возраста также обнаруживали
наличиесерозно-слизистогоэкссудатамолочно-белогоцветавбурсе,
обесцвечивание или нарушение структуры костного мозга.
2.2.5. Серологическая диагностика ИАЦ
Были проведены исследования проб сыворотки крови цыплят из партий,
полученных от невакцинированных и из партий, полученных от вакцинированных
против ИАЦ родителей. Динамика формирования антител к ВАЦ у цыплят,
полученных от невакцинированных (1 пик смертности) и вакцинированных
родителей (2 пика смертности) представлена на рисунке 2.
Количество положительных проб сыворотки крови
цыплят-бройлеров к ВАЦ, %
79,6
положительных проб, %
43,5
22,381,0
1,4
Количество
07,024,0
Возраст цыплят, суток

Цыплята от невакцинированных родителей
Цыплята от вакцинированных родителей

Рисунок 2 – Количество положительных проб сыворотки крови цыплят-бройлеров к ВАЦ,
полученных от невакцинированных и вакцинированных родителей
На рисунке 2 видно, что количество положительных проб сыворотки крови
цыплят, полученных от невакцинированных родителей, в суточном возрасте
составляет 22,3%, в возрасте 35-38 суток – 81,0%. Количество положительных проб
сыворотки крови цыплят, полученных от вакцинированных родителей, в суточном
возрасте составило 79,6%. Начиная с 28-суточного возраста количество
положительных проб сыворотки крови увеличилось до 7,0%, а в 35-38-суточном
возрасте составило 24,0%. Выявление антител в пробах сыворотки крови цыплят в
условияхотсутствиявакцинациипротивИАЦввозрасте28-38суток
свидетельствует о циркуляции ВАЦ на территории птицефабрики.
Нередко к моменту убоя (36-38 суток) антитела не успевают вырабатываться.
Для выявления наличия титров антител к ВАЦ после переболевания было отобрано
25 условно больных голов цыплят с целью их передержки в течение 14 дней.
Результатыисследованийсывороткикровицыплятпослепередержки
представлены в таблице 1.
Таблица 1 – Результаты серологических исследований проб сыворотки крови цыплят-бройлеров
после передержки (n=25)
Количество
Возраст,Средний титрКоэффициент
Диапазон титров антител*положительных
сутокантителвариации, %
проб
381:2091:34 – 1:13961453
521:43691:882 – 1:73794023
Примечание: *положительные значения титров антител 1:725 и выше

Данные таблицы 1 показывают, что отсутствие антител у цыплят-бройлеров
в возрасте 38 суток (при убое) не является доказательством благополучия партии по
ИАЦ. При наличии у птицы клинических, патологоанатомических признаков ИАЦ,
признаков бактериальных инфекций (E.coli) следует предполагать, что цыплята
находились в процессе переболевания и антитела к ВАЦ не успели сформироваться
в период содержания.
2.2.6. Гематологические исследования крови цыплят-бройлеров
Для проведения гематологического исследования были отобраны пробы
крови от цыплят 19-21-суточного возраста с клиническими признаками ИАЦ в
период пика смертности и от цыплят, не имеющих клинических признаков ИАЦ.
Было установлено, что уровень гематокрита в пробах крови, полученных от
цыплят с признаками ИАЦ на 4,0-8,6% ниже диагностического уровня (27%) и на
29,5-50,9% ниже, чем уровень гематокрита в пробах, полученных от цыплят без
признаков ИАЦ. В пробах крови, полученных от цыплят с признаками ИАЦ,
отмечалась лейкопения и тромбоцитопения.
2.2.7. Вирусологические исследования патологического материала
Для проведения вирусологических исследований были использованы 4-5-
суточные СПФ-куриные эмбрионы. Эмбрионы заражали в желточный мешок
суспензией из печени клинически больных цыплят в дозе 0,2 см 3 и инкубировали в
течение 14 суток при температуре 37ºС. При вскрытии видимых поражений
эмбрионов выявлено не было. В результате проведенных исследований методом
ПЦР в образцах тканей эмбрионов и ХАО был выявлен ВАЦ.
Уцыплят,выведенныхизинфицированныхэмбрионов,при
патологоанатомическом вскрытии были выявлены анемия кожных покровов,
слизистых оболочек, почек, печени, селезенки, наличие серозно-слизистого
экссудата в бурсе, атрофия тимуса, обесцвечивание костного мозга.
2.2.8. Молекулярно-биологические исследования патологического материала
С целью определения штамма вируса и изучения структуры генома
возбудителя ИАЦ, были исследованы 2 пробы пат. материала: проба № 1 –
гомогенат печени, отобранной от бройлеров 22-суточного возраста из ООО «ТПК
«Балтптицепром»; проба № 2 (сравнительный контроль) – гомогенат печени,
отобранной от кур-несушек из ЗАО «Галичское по птицеводству».
Для проведения ПЦР и секвенирования был разработан набор специфических
олигонуклеотидовнаоснованииизвестныхпоследовательностейгенов,
полученныхизбанковданныхGenBank(www.ncbi.nlm.nih.gov).
Олигонуклеотидные праймеры были синтезированы в ООО «Бигль».
Анализ продуктов амплификации проводили методом электрофореза с
использованием раствора трисборатного буфера, концентрированного с бромидом
этидия. В качестве положительного контроля использовали вакцинный штамм
«Cux-1».РезультатыанализафрагментовДНКметодомэлектрофореза
представлены на рисунке 3.
Рисунок 3 – Результаты электрофореза продуктов амплификации фрагмента генома вируса
инфекционной анемии цыплят в патологическом материале: 1 – отрицательный контроль
выделения; 2,3 – положительные пробы; 4,5 – отрицательные пробы; 6 – вакцинный штамм «Сux-
1» ИАЦ; 7 – маркер молекулярной массы.
Секвенирование амплифицированных фрагментов генома проводили с
использованием прямого и обратного праймеров, продукты секвенирования
разделялиметодомкапиллярногоэлектрофорезасдетекциейсигнала
флюоресценции. В результате сравнительного анализа полученных нуклеотидных
последовательностей фрагментов гена VP1 с другими штаммами и изолятами
вируса ИАЦ из базы данных PubMed было установлено, что последовательность
фрагмента гена VP1 образца изолята вируса, выделенного от цыплят-бройлеров,
имеет гомологию 96% с изолятом CAV/SLA12/13, а также имеет гомологию 89% с
изолятом CN_BR-37 и штаммами JS-China 78, AN-China 34. При анализе
последовательности фрагмента гена VP1 образца изолята, полученного от кур-
несушек, была обнаружена гомология 96% с изолятом CN_BR-37 и штаммом JS-
China 78 (GeneBank, www.ncbi.nlm.nih.gov).
2.2.9. Получение и очистка вируссодержащего материала
ВСМ готовили из печени вынужденно убитых цыплят 22-суточного возраста
с клиническими признаками болезни или из печени свежих трупов цыплят с
патологоанатомическими признаками ИАЦ. Кусочки печени гомогенизировали с
добавлением фосфатно-солевого буфера (ФСБ) (рН 7,3-7,5) в соотношении 1:10.
Суспензиюпосле3-5-кратногозамораживания-оттаиванияивнесения
антибиотиков осветляли центрифугированием при 10 000g в течение 30 минут.
Надосадочную жидкость проверяли на стерильность посевом на питательные
среды, затем супернатант помещали в морозильник и хранили при минус 70ºС. Для
полученияочищенноговирусачастьсупернатантаподвергали
ультрацентрифугированию при 80 000 g в течение 3 часов при 10º С, полученный
осадок ресуспендировали в 1,0 см3 стерильного фосфатно-солевого буферного
раствора (pH 7,3 – 7,5). Концентрацию вируса определяли методом количественной
ПЦР и выражали в копиях (к) вирусных частиц в микролитре (к/мкл). ВСМ очищали
методом гельхроматографии на макропористом стекле 700Å, обработанном
поливинилпиролидоном.
Очищенный ВСМ повторно ультрацентрифугировали при 80 000 g в течение
3 часов при 10º С, полученный осадок ресуспендировали в 0,5 см3 стерильного ФСБ
(pH 7,3 – 7,5) и в дальнейшем использовали для получения моноспецифической
сыворотки и электронно-микроскопического исследования.
Моноспецифическуюсывороткуполучалисцельюопределения
специфичности выделенного вируса. СПФ-цыплятам 15-суточного возраста
внутрибрюшинно 1-кратно вводили ВСМ в объеме 0,2 см3. Через 21 день после
введения ВСМ у цыплят отбирали сыворотку крови, которую исследовали в ИФА.
Средний титр антител к вирусу ИАЦ в сыворотке крови составил 1:3451. В
исследуемых пробах сыворотки крови антител к возбудителям ИББ, НБ, ИЛТ, ИБК,
реовирусу и метапневмовирусу выявлено не было.
2.2.10.Электронно-микроскопическоеисследованиепатологического
материала проводили методом негативного контрастирования с использованием
2%-ного раствора фосфорно-вольфрамовой кислоты, нейтрализованного (до pH 7,0)
гидроксидом натрия. При исследовании образца были обнаружены скопления
вирусоподобных частиц сферической формы, размером 20,0-25,0±1,0 нм, по
морфологическим характеристикам сходные с ВАЦ.
2.2.11. Постановка биопробы на СПФ-цыплятах
ДляпостановкибиопробыиспользовалибеспородныхСПФ-цыплят
суточноговозраста.Цыплятамопытнойгруппыинокулировали10%
вируссодержащую суспензию, внутрибрюшинно в объеме 0,2 см3. Цыплятам
контрольной группы ВСМ не вводили. В ПЦР через 24 часа после инокуляции ВСМ
было установлено наличие ВАЦ в крови цыплят опытной группы. На 10-12 сутки
после инокуляции ВСМ у цыплят опытной группы были выявлены потеря аппетита,
депрессия (малоподвижность, сонливость), бледность кожных покровов и видимых
слизистых оболочек, отставание в росте. Патологоанатомические изменения
(анемия, истощение, бледность кожных покровов, конъюнктивы, слизистой
оболочкиротовойполости,выраженнаягипоплазияиатрофиятимуса,
обесцвечиваниекостногомозга)наблюдалисьу100%экспериментально
зараженных цыплят. У части цыплят выявляли подкожные и внутримышечные
кровоизлияния в мышцах бедра, голени.
2.2.12. Влияние иммуносупрессии, обусловленной вирусом ИАЦ, на
формирование поствакцинального иммунного ответа
2.2.12.1. Иммунный ответ после вакцинации цыплят против НБ
По результатам исследований в РЗГА, установлено, что после вакцинации
количество иммунных к вирусу НБ цыплят из благополучных по ИАЦ птичников
составляло от 82 до 86%, а из неблагополучных – от 28 до 68%. Средний титр
антител в пробах сыворотки крови, полученных от цыплят из благополучных по
ИАЦ птичников после применения живой вакцины, составил 4,4 log2, а средний титр
антител в пробах сыворотки крови, полученных от цыплят из неблагополучных
птичников, был ниже на 2,3 log2 и составил 2,1 log2.
2.2.12.2. Иммунный ответ после вакцинации цыплят против ИББ
Результаты исследований проб сыворотки крови в ИФА на наличие
поствакцинальных антител к вирусу ИББ представлены на рисунке 4.
Средние значения титров антител к вирусу ИББ в пробах сыворотки крови
цыплят из птичников №№ 26, 27, 28, 59, 60 (μ=1:5837±1903; min 1:5327 – max
1:7542) выше средних значений титров антител в пробах сыворотки крови цыплят
из птичников №№ 54, 55, 61, 62, 63 (μ=1:1051±1629; min 1:221 – max 1:2390, где μ –
здесь и далее среднее значение) в среднем в 5,6 раза.
Средние значения титров антител к вирусу ИББ
7542

Уровень титров антител в
80005408 5327 53455665
6000
40002390

ИФА
20001053941
651221
26272859 60 54 55 616263
Номера птичников

Рисунок 4 – Результаты исследований проб сыворотки крови цыплят-бройлеров на наличие
антител к вирусу ИББ в возрасте 37 суток

2.2.12.3. Иммунный ответ после вакцинации цыплят против ИБК
Результаты исследований проб сыворотки крови в ИФА на наличие
поствакцинальных антител к вирусу ИБК представлены на рисунке 5.
Средние значения титров антител к вирусу ИБК
Уровень титров антител в

6000
4476
3987
40003006 3337 3221
ИФА

12661461 1037
2000853 1197
26272859605455616263
Номера птичников

Рисунок 5 – Результаты исследований проб сыворотки крови цыплят-бройлеров на наличие
антител к вирусу ИБК в возрасте 37 суток

Средние значения титров антител на птичниках №№ 26, 27, 28, 59, 60
(μ=1:3605±1218; min 1:3006 – max 1:4476) выше средних значений титров антител
на птичниках №№ 54, 55, 61, 62, 63 μ=1:1163±461; min 1:853 – max 1:1461) в среднем
в 3,1 раза.
2.2.13. Влияние ИАЦ на качество мясной продукции
При осмотре тушек цыплят выявляли следующие причины выбраковки,
связанные с ИАЦ: венозную гиперемию кожи в области крыльев, серозные и
серозно-геморрагические отеки и кровоизлияния в подкожной клетчатке в области
грудины, брюшной стенки, крыльев и нижних конечностей, наличие на мышцах
наружных перимизий. Тушки с вышеперечисленными дефектами выбраковывали и
направляли в промышленную переработку. Тушки, имеющие признаки осложнения
условно-патогенной микрофлорой, утилизировали.
2.2.14.Построение системы профилактики ИАЦ на птицефабрике
На основе результатов проведенных исследований на птицефабрике была
разработанасистемапрофилактикиИАЦ,котораявключала: проведение
ветеринарно-санитарных мероприятий; соблюдение технологических параметров
кормленияисодержания;профилактикумикотоксикозов;поставки
инкубационного яйца/цыплят только от вакцинированных родителей; обеспечение
благополучия цыплят по БМ и ИББ; использование антибактериальных средств при
выявлении случаев бактериальных инфекций; использование, начиная с раннего
возраста,пробиотических,пребиотическихпрепаратов,фитобиотиков,
подкислителей; для поддержания и развития иммунной системы – применение в
первые 7-14 суток жизни цыпленка иммуностимуляторов. При разработке схемы
специфической профилактики использовали принцип совмещения вакцинаций с
целью увеличения интервалов между иммунизациями, уменьшения кратности
обработок и, как следствие, снижения уровня стресса и нагрузки на иммунную
систему цыпленка в раннем возрасте. Разработанная схема специфической
профилактики применяется на птицефабрике с 2016 года по настоящее время.
3.ЗАКЛЮЧЕНИЕ
1.Изучены эпизоотологические особенности течения инфекционной
анемии цыплят у цыплят-бройлеров, клинические и патологоанатомические
признаки проявления болезни в птицеводческом хозяйстве промышленного типа.
Установлено, что течение ИАЦ характеризуется иммунодепрессией, отставанием в
росте и развитии, анемией, атрофией тимуса, аплазией костного мозга, наличием
геморрагий и подкожных инфильтратов, гангренозным поражением крыльев и др.,
снижением качества мясной продукции, повышением смертности, а также
возникновением секундарных инфекций.
2.Проведены серологические,гематологические,вирусологические,
электронно-микроскопическиеимолекулярно-биологическиеисследования
патологического материала. В результате исследований выделен изолят вируса
ИАЦ, который депонирован в Государственную коллекцию вирусов Института
вирусологии им. Д.И. Ивановского ФГБУ «ФНИЦЭМ им Н.Ф. Гамалеи» Минздрава
России как патогенный штамм «МЕ-77», семейство Circoviridae, род Gyrovirus под
регистрационным номером 2837. Установлено, что изоляты ВАЦ не имеют
существенных генетических различий. Вирус ИАЦ при заражении КЭ не вызывает
у них каких-либо видимых поражений, а у суточных СПФ-цыплят при заражении
полевым изолятом ВАЦ наблюдается депрессия, отставание в росте, анемия и
высокая смертность. Также установлено, что у цыплят с признаками ИАЦ
наблюдается падение гематокрита на 4,0-8,6% по отношению к диагностическому
уровню (27%) и на 29,5-50,9% по отношению к уровню гематокрита в пробах крови,
полученных от цыплят без признаков ИАЦ.
3.Изучено влияние иммуносупрессии, обусловленной вирусом ИАЦ, на
иммунный ответ у цыплят-бройлеров после вакцинации против НБ, ИББ и ИБК.
Установлено, что вирус ИАЦ подавляет выработку антител к вакцинным вирусам
НБ, ИББ, ИБК. Было выявлено снижение средних значений титров антител в
сыворотках крови цыплят из неблагополучных по ИАЦ партий к вирусу НБ на 2,3
log2, к вирусу ИББ в 5,6 раза, к вирусу ИБК в 3,1 раза по отношению к средним
значениям титров антител в сыворотках крови цыплят из благополучных по ИАЦ
партий.
4.Разработана система профилактики инфекционной анемии цыплят для
промышленного птицеводческого хозяйства мясного направления, которая
включает проведение ветеринарно-санитарных, лечебно-профилактических и
противоэпизоотическихмероприятий.Системапредполагаетсоблюдение
технологии содержания и кормления, профилактику стрессов, использование
пробиотическихпрепаратов,адсорбентовмикотоксинов,фитобиотиков,
иммуностимуляторов.Схемаспецифическойпрофилактикипостроенана
принципах совмещения вакцинаций с целью увеличения интервалов между
вакцинациями, уменьшения кратности обработок, обеспечения эпизоотического
благополучия по инфекционным болезням птиц, прежде всего по ИББ.
5.На основании проведенных исследований разработаны Методические
положения «Диагностика и профилактика инфекционной анемии цыплят в
птицеводческих хозяйствах промышленного типа» от 26.02.2021г.
4. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
Методические положения «Диагностика и профилактика инфекционной
анемии цыплят в птицеводческих хозяйствах промышленного типа» от 26.02.2021г.
рекомендованы для использования ветеринарными специалистами промышленных
птицеводческих хозяйств и студентов ВУЗов ветеринарного и биологического
профиля.
Разработанная система профилактики инфекционной анемии цыплят
внедрена в промышленном птицеводческом предприятии ООО ТПК
«Балтптицепром» и применяется при выращивании цыплят-бройлеров.
Материалы, изложенные в диссертационной работе, используются в учебном
процессе высших учебных заведений ветеринарного направления и на курсах
повышения квалификации ветеринарных врачей, работающих в промышленном
птицеводстве.
5. ПЕРСПЕКТИВЫ ДАЛЬНЕЙШЕЙ РАЗРАБОТКИ ТЕМЫ
В связи с тем, что биологические свойства вируса инфекционной анемии
цыплят не до конца изучены, в настоящее время в мире не удалось создать
эффективныхсредствспецифическойпрофилактикиболезни.Такжене
разработаны отечественные средства серологической диагностики ИАЦ.
Вирус ИАЦ имеет такие же особенности в структуре генома, как и ТТ вирусы,
в связи с чем ВАЦ был выделен в отдельный род Gyrovirus и отнесен к семейству
Anelloviridae. Капсид ВАЦ содержит белок апоптин, который специфически
вызывает апоптоз в опухолевых клетках и процессы трансформации у человека.
Установлено, что вирус ИАЦ обладает способностью инфицировать другие виды
птиц, а также мышей, кошек, собак и человека.
Такимобразом,изучениебиологическихсвойстввирусаИАЦ,
эпизоотологиии и эпидемиологии болезни, разработка средств диагностики и
специфическойпрофилактикиявляютсяактуальнымииперспективными
направлениями дальнейших исследований.