Лечебно – профилактическая эффективность пробиотика на основе штамма Enterococcus Faecium L-3 при энтерите телят

Материалы и методы исследования
Работа осуществлялась на кафедре клинической диагностики ФГБОУ ВО
«Санкт-Петербургскийгосударственныйуниверситетветеринарной
медицины». Клинические эксперименты проводились в период с 2018 по 2021
гг. в условиях животноводческих хозяйств Ленинградской области. За это
время было обследовано 295 телят, из которых пробиотик получали 180
животных. В то время как 115 животных пробиотический препарат не
принимали и у них признаки энтерита проявлялись в 80,0% случаев (92
теленка).
В экспериментах проводился подбор животных по принципу аналогов с
учётом возраста, живой массы и физиологического состояния. В каждом опыте
было сформировано 2 группы телят черно-пестрой породы (подопытная и
контрольная).
Телятам подопытной группы задавали пробиотик с рождения и до 45-
дневного возраста один раз в день по 0,5 грамм с кормом, а животным
контрольной группы пробиотик не давали при всех одинаковых условиях
кормления и содержания.
Для оценки действия пробиотика на организм телят ежедневно проводили
клиническое обследование животных.
Длянаучно-исследовательскойработыбылаиспользована
лиофилизированная форма пробиотика на основе штамма микроорганизмов
Enterococcus Faecium L-3 в разведении 1х10¹º КОЕ (колониеобразующих
единиц) на 1 грамма сухого вещества (рисунок 1).

Рисунок 1 – Пробиотик в виде сухого порошка (лиофилизата) на основе штамма Enterococcus
Faecium L-3.
Лиофилизат был изготовлен по следующей методике: изначально
делают высевы аутобактерий из фекалий (не менее 0,5 грамм кала) телят на
агаризованные питательные среды. После этого к 1 грамму фекалий добавляют
9,0 мл физиологического раствора хлорида натрия с добавлением фосфатов
натрия двух и однозамещенных. Далее делают посевы суспензии фекалий в
разведении 1:10 в количестве 100,0 мкл на питательную агаризованную среду
для энтерококков с азидом натрия и культивируют в течение 24-48 часов при
температуре +370С. Следующий шаг — это отбор типичных по морфологии
колоний E. Faecium сирене-розового цвета со светло-розовым ободком, которые
отсевают в новую чашку Петри с плотной азидной средой с целью накопления
чистой культуры. Культивируют в течение 24 часов при +37 0С. После
окрашивания мазков по методу Грама микроскопируют препараты. При
световой микроскопии клетки E. Faecium приобретают темно-синий цвет,
имеют округлую форму и располагаются в виде коротких цепочек. Чистые
культуры микроорганизмов без генов патогенности высевают на 10,0 мл 5,0%
бульона из соевых белковых изолятов и инкубируют в течение 24-48 час при
+370С.
После получения 10,0 мл закваски применяют метод лиофилизации,
который позволяет получить сухой препарат без потери его структурной
целостности и биологической активности. При этом препараты становятся
более устойчивыми к любым факторам внешнего воздействия и могут
сохранять свои свойства в течение длительного периода хранения.
Лиофилизация проводилась на установке лиофильной сушки FreeZone
Triad 2,5л/-850С (Рисунок 2).

Рисунок 2 – Установка лиофильной сушки FreeZone Triad 2,5л/-850С.
Данная установка предназначена для обезвоживания предварительно
замороженных биологических объектов в условиях низких температур и
вакуума с целью их длительного хранения. Предварительно замороженные
материалы (от -40 до -60°C) в ампулах или флаконах переносятся в
сублимационную сушилку FreeZone 2,5л/-85°C, где создается вакуум и
поддерживается низкая температура. В результате сублимации с поверхности
замороженного материала удаляется свободная вода, препарат переходит из
замороженного твёрдого состояния в сухое. Сушку объекта проводят в той же
камере при t до +20 ° С и выше, что удаляет связанную воду из препарата.
Когда сушка завершена, вакуумный насос останавливается и стерильный сухой
воздух или азот вводится в камеру через фильтр. Ампулы или флаконы быстро
закрываются, чтобы предотвратить попадание влаги во время хранения. После
проведённых манипуляций получали лиофильно высушенную форму
пробиотического препарата Enterococcus Faecium L-3 в разведении 1х10¹º КОЕ
(колониеобразующих единиц) на 1 грамм сухого вещества.
Также проводили морфологический, иммунологический, биохимический
анализы крови в 14-ти, 30-ти и 45-ти дневном возрасте.
Чтобы провести лабораторные исследования осуществляли взятие крови
из ярёмной вены телят 14-ти, 30-ти и 45-ти дневного возраста утром перед
первым кормлением. Кровь брали в пробирки с антикоагулянтом Трилоном Б
(из расчета 4 капли 10,0% раствора Трилона Б на 10 мл крови). Для проведения
биохимического и иммунологического анализа использовали сыворотку крови,
которую получали методом отстаивания в прохладном месте при температуре
+4-10 ºС. Через день сыворотку отделяли и переносили в пробирки типа
Эппендорф. Сыворотку при необходимости замораживали и хранили в
морозильной камере при температуре не выше -20ºС).
Определение количества эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина,
скорости оседания эритроцитов (СОЭ) и гематокритной величины, проводили
по традиционной методике. Количество эритроцитов и лейкоцитов
подсчитывали на ветеринарном автоматическом гематологическом анализаторе
МЕК-6550К. Скорость оседания эритроцитов определяли по методу
Панченкова, гемоглобин – гемиглобинцианидным методом, гематокритную
величину –с помощью центрифуги CELLOCRIT– 2.
Биохимические показатели в сыворотке крови определяли на
биохимическом анализаторе «Stat Fax 1904 Plus» по следующим методам:
•общий белок – биуретовым методом, который заключается в том,
что белки в щелочной среде реагируют с ионами меди с образованием
комплексных соединений, окрашенных в фиолетовый цвет (биуретовая
реакция), при этом интенсивность окраски раствора пропорциональна
содержанию белков в исследуемой пробе;
•альбуминыопределяликолориметрическимметодомс
бромкрезоловым зеленым, основанном на том, что альбумины при pH 4,2
проявляют способности катиона и способны связаться с анионным красителем
бромкрезоловым зеленым с образованием комплекса сине-зеленого цвета;
•α-амилазу определяли энзиматическим кинетическим методом;
•щелочную фосфатазу – с помощью кинетического метода с
диэтаноламиновым буфером;
•креатинин – псевдокинетическим методом на основе реакции Яффе
без депротеинизации;
•мочевину – уреазно-глутаматдегидрогеназным кинетическим
методом;
•холестерин – энзиматическим колориметрическим методом;
•билирубин – методом Йендрашика-Грофа;
•аланинаминотрансфераза (АлАТ) – энзиматическим кинетическим
методом;
•аспартатаминотрансфераза (АсАТ) – энзиматическим кинетическим
методом.
Иммунологические показатели определяли следующими методами:
•бактерицидная активность сыворотки крови определялась по
методу О.В. Смирновой и Т.А. Кузьминой;
•лизоцимная активность сыворотки крови по Дорофейчуку В.Г.;
•циркулирующие иммунные комплексы (ЦИК) определяли методом
преципитации 3,5% раствором полиэтиленгликоля и их количество выражали в
условных единицах оптической плотности (усл.ед.);
•иммуноглобулины (Ig) определяли методом осаждения сульфатом
цинка.
Исследования микробиоты кишечника в фекалиях проводились в
медицинской научно-исследовательской лаборатории «Эксплана» (СПб)
методом ПЦР-РВ с использованием набора праймеров «Колононофлор-16»
(табл. 1).
Таблица 1. Перечень выявляемых микроорганизмов и каналы детекции
результатов амплификации.
№ пробирки в стрипеНазвание смеси для амплификации и окраски
FAMHEX
1Общая бактериальная
___
масса
2Lactobacillus spp.___
3Bifidobacterium spp.___
4Escherichia coli___
5Bacteroides fragilis group___
6Faecalibacterium
___
prausnitzii
7Klebsiella pneumoniaeKlebsiella oxytoca
8Candida spp.Staphylococcus aureus
9Escherichia coli
___
enteropathogenic
10Enterococcus spp.___
11Bacteroides
___
thetaiotaomicron
12Clostridium difficileClostridium perfringens
13Proteus spp.___
14Enterobacter spp. /
___
Citrobacter spp.
15Fusobacterium nucleatum
___

16Salmonella spp.Shigella spp.

Вся информация, полученная в опытах, была статистически обработана с
использованием программ Microsoft Excel 2016 и Statistica for Windows, v. 10.
на персональном компьютере. Достоверность различий оценивали с
применением t-критерия Стьюдента при уровне значимости P≤0,05.
Текст диссертационной работы и автореферата оформляли в соответствии
с ГОСТ Р 7.0.11 – 2011 «Диссертация и автореферат диссертации. Структура и
правила оформления».
Результаты собственных исследований и их анализ
Во время опыта было обследовано 295 телят, из которых признаки
энтерита проявлялись у 101 теленка. При том, что у телят, которые принимали
пробиотический препарат с момента рождения как профилактическое средство,
клинические проявления энтерита отмечали только у 5,0% животных.
Проведенные клинические исследования позволили установить, что
телята заболевали энтеритом в первые дни жизни и имели одинаковые
клинические симптомы заболевания. У телят наблюдалось общее угнетение,
животные становились менее активными, чаще лежали. Аппетит у телят в
начале заболевания был снижен, а в разгар болезни регистрировали анорексию.
Видимые слизистые оболочки, как правило, были анемичные, температура тела
была или на верхних границах нормативных значений или имела
субфебрильный характер. У больных животных наблюдали проявление
диарейного синдрома: усиление перистальтики кишечника, при аускультации
кишечника – громкое и постоянное урчание, учащение актов дефекации,
каловые массы бесформенные с резким запахом, жидкой консистенции.
Анальный сфинктер при тяжелом течении энтерита находится в
расслабленном состоянии; при ректальном исследовании в прямой кишке
наблюдались жидкие экскременты с примесью слизи. Шерсть становилась
тусклой и растрепанной, на хвосте и тазовых конечностях обнаруживались
фекалии (рисунок 3). Цвет стула в основном желтый с различной
интенсивностью. Запах кала резкий, кисло-гнилостный со смесью запаха
сероводорода. В фекалиях часто наблюдались слизь (рисунок 4), пузырьки газа
и непереваренные частицы корма.

Рисунок 3 – Шерсть, испачканная фекалиями в области хвоста и тазовой конечности.

Рисунок 4 – Фекальные массы со слизью

При пальпации брюшных стенок в нижней трети у животных отмечалась
болезненность. У телят также наблюдались признаки обезвоживания из-за
изнуряющей диареи. Присутствовала общая слабость, сухость слизистых
оболочек и кожи, низкая саливация, сниженная эластичность кожи, запавшие в
орбиты глазные яблоки (эндофтальм).
Телята, которые не принимали пробиотический препарат, существенно
отставали по массе тела от животных подопытной группы. Телята с
пробиотической поддержкой в 45-ти дневном возрасте весили на 13,0% больше
(Р≤0,01), чем телята контрольной группы. Среднесуточные привесы животных,
не принимающих пробиотический препарат, в первый месяц жизни были на
24,0% меньше по сравнению с животными, которые принимали препарат, а в
полуторамесячном возрасте – на 31,0% (P≤0,05).
Для сравнительной оценки терапевтических мероприятий при энтерите
телят раннего постнатального периода было сформировано 2 группы
животных. В подопытную группу вошли телята, которым ежедневно с первого
дня жизни задавали пробиотик в дозе 0,5 грамм в день с кормом, но у них всё
равно проявились признаки энтерита. Этим животным продолжали вводить
препарат в той же дозировке по 0,5 грамм один раз в день с кормом в качестве
терапии. Контрольную группу составили животные, получавшие лечение по
схеме, применяемой в хозяйстве.
Сравнительный анализ двух схем лечения показал, что у телят
подопытной группы продолжительность болезни в среднем была 2,5±0,3 дней
при терапии с помощью пробиотического препарата, в то время как у
животных, не принимавших пробиотик, признаки заболевания сохранялись в
среднем до 5,2±0,5 дней с начала лечения по принятой в хозяйстве схеме. Тем
самым, можно сделать вывод, что применения лиофильно высушенной формы
пробиотического препарата на основе штамма бактерий Enterococcus Faecium
L-3 является более эффективным средством в лечении энтерита телят раннего
постнатального периода.
Результаты иммунологического исследования сыворотки крови после
лечения телят показали, что у животных, которым проводили терапию
пробиотическим препаратом уровень IgМ, IgG, БАСК, ЛАСК были достоверно
больше, чем у животных, которых лечили по традиционной для хозяйства
схеме О положительном влиянии пробиотиков на уровень иммуноглобулинов и
показатели неспецифической резистентности также пишут Ю. Н., Федоров,
(2009); Н. Н., Шульга, и соавт., (2012); А. А., Хэ, (2013); В. А., Трушкин, и
соавт., (2017); О. А., Грачева, (2019).
Уровень IgM и IgG у телят подопытной группы был достоверно выше
(Р≤0,05), чем у животных контрольной группы на 27,0% и 48,0%,
соответственно. В то же время показатели ЛАСК и БАСК были также
достоверно больше (Р≤0,05), чем у животных контрольной группы на 34,0% и
35,0%, соответственно.
Морфологические, иммунологические, биохимические показатели крови,
а также состав микрофлоры желудочно-кишечного тракта являются очень
важными критериями состояния организма в период болезни. В описываемых
опытах проводились именно эти исследования.
При исследовании морфологического состава крови было отмечено, что
уже в двухнедельном возрасте у телят без пробиотической поддержки
количество эритроцитов в крови телят было достоверно выше на 34,0%, чем у
телят подопытной группы. Такая тенденция сохранялась в 30-ти и в 45-ти
дневном возрасте. Так к 30 дню эксперимента количество эритроцитов в крови
животных подопытной группы было достоверно ниже на 17,0%. К 45-м суткам
эксперимента этот показатель был на 15,0% ниже, чем у телят контрольной
группы.
Что касается гематокритной величины, то данный показатель у телят 14-
ти дневного возраста контрольной группы был достоверно больше на 31,0%,
чем у телят, которые принимали пробиотический препарат. К месячному и 45-
ти дневному возрасту такая тенденция сохранялась. Так в 30-ти дневном
возрасте у телят контрольной группы гематокритная величина была больше на
21%, по сравнению с телятами подопытной группы.
Уровень гематокрита у телят в 45-ти дневном возрасте опытной группы
составил 35,4 ± 1,5%, что несколько выше, чем у телят контрольной группы
(33,2±1,1%), но разница была не достоверной (P>0,05). Увеличение количества
эритроцитов и гематокритной величины связано с обезвоживанием организма,
вследствие диареи.
Количество гемоглобина в крови двухнедельных телят в группе,
получавшей пробиотик, было недостоверно выше, чем у телят, которые не
получали пробиотик (P>0,05).
Также у телят контрольной группы 30-ти дневного возраста уровень
гемоглобина был достоверно выше на 12,0%, чем у животных подопытной
группы.
К 45-ти дневному возрасту эта тенденция сохранилась и концентрация
гемоглобина у телят, не принимавших пробиотический препарат, была
достоверно выше на 10,0%, что связано с эксикозом организма.
Одновременно с этим в двухнедельном возрасте количество лейкоцитов у
животных, принимавших препарат, было больше на 23,0%.
К 30 дню эксперимента количество лейкоцитов в крови телят
контрольной группы также было достоверно ниже на 13,0%, чем у телят
подопытных групп.
В 45-ти дневном возрасте разница в показателях лейкоцитов у животных
обеих опытных групп не была отмечена (P>0,05).
Что касается СОЭ, то этот показатель на 14-й, 30-й и 45-й дни
исследования у животных в группах с пробиотической поддержкой и без неё
достоверных различий не имел. Результаты наших исследований совпадают с
данными, полученными А. М., Воробьевым, (2011); Д. А., Акимовым, (2015);
Р.А., Мерзленко, и соавт., (2017); А. А. Эленшлегером, (2019); А. В.,
Требуховым (2019); О. А., Грачевой, (2019).
По результатам исследования иммунологических показателей крови
видно, что в 14-ти дневном возрасте в таких иммунологических показателях,
как содержание общего белка, альбуминов, IgA, IgM, IgG достоверных
различий в показателях не было (P>0,05).
На протяжении всего периода исследования была выявлена тенденция к
повышенному уровню бактерицидной и лизоцимной активности у телят
подопытной группы.
Тем самым, в 14-ти дневном возрасте у телят, принимавших пробиотик,
уровень БАСК был на 27,0%, а ЛАСК на 21,0% больше, чем у телят
контрольной группы. Такая картина сохранилась в 30-ти и 45-ти дневном
возрасте.
К 30-му дню жизни у телят подопытной группы БАСК была выше на
27,0%, чем у животных контрольной группы, а уровень ЛАСК был достоверно
выше у телят, принимавших пробиотический препарат, на 26,0%, чем у
животных контрольной группы.
В 45-ти дневном возрасте у животных подопытной группы уровень БАСК
был выше на 61,0%, а ЛАСК на 34,0%, чем у телят контрольной группы. Это
говорит о стимулирующем влиянии пробиотического препарата на основе
штамма Enterococcus Faecium L-3 на показатели неспецифической защиты
организма телят.
В 30 – ти дневном возрасте уровень общего белка в сыворотке крови был
достоверно выше на 11,0% у телят подопытной группы, чем у телят
контрольной группы.
Более низкое содержание общего белка в сыворотке крови у телят
контрольной группы обусловлено нарушением всасывания в тонкой кишке, а
также с длительным голоданием.
Следует отметить, что содержание глобулинов в крови у телят
подопытной группы в 30-ти дневном возрасте было больше на 19,5 %, чем у
животных, которые не принимали пробиотический препарат.
Кроме того, показатели IgG у телят подопытной группы в месячном
возрасте были на 31,0% больше, чем данный показатель у животных
контрольной группы.
Что касается показателей иммунитета, таких как: количество альбуминов,
IgA, IgM, IgG в крови, то у телят, принимавших препарат, в 45-ти дневном
возрасте их показатели были выше, чем у телят группы контроля на 23,0%,
35,0%, 22,0% и на 63,0%, соответственно. Это говорит о стимулирующем
влиянии пробиотического препарата на основе штамма Enterococcus Faecium L-
3 на показатели иммунитета телят, что подтверждается данными, полученными
Т. А., Инюкиной, и соавт., (2010); С. П., Ковалевым, и соавт., (2015); Р.А.,
Мерзленко, и соавт., (2018).
Следует отметить, что уровень циркулирующих иммунных комплексов
(ЦИК) и процентное соотношение альбуминов и глобулинов в течение всего
периода исследования у телят с пробиотической поддержкой и без неё не
показал значимой разницы (P>0,05).
В то же время при нарастании уровня условно-патогенной микрофлоры у
телят в возрасте 14 и 30 дней были достоверно ниже следующие показатели:
количество лейкоцитов, уровень общего белка, IgG и активность амилаза,
показатели БАСК и ЛАСК в контрольной группе, чем у животных,
принимавших пробиотик. Это указывает на сильную обратную зависимость
между этими показателями.
Результаты исследований биохимического состава сыворотки крови телят
показали, что в 14 – ти дневном возрасте активность амилазы у телят
подопытной группы была выше на 38,0%, чем у телят контрольной группы.
В этом возрасте у животных, которые не принимали пробиотический
препарат уровень билирубина был достоверно выше на 46,0%, чем у телят
подопытной группы.
Также в месячном возрасте у телят, не принимавших пробиотик, уровень
билирубина был достоверно выше на 82,0%.
Эта тенденция сохранилась и к возрасту 45 – ти дневному, но в меньшей
степени. Уровень билирубина у контрольной группы телят был достоверно
выше, чем у животных с пробиотической поддержкой на 25,0%.
Что касается активности щелочной фосфатазы, то в двухнедельном
возрасте данный показатель был больше на 51,0% у телят контрольной группы,
чем у животных, которые принимали пробиотический препарат, что говорит о
возможных дистрофических изменениях в печени и общей интоксикации
организма.
В месячном возрасте у телят, не принимавших пробиотик, активность
щелочной фосфатазы была выше на 28,0%, чем у подопытной группы
животных.
В 45-ти дневном возрасте активность щелочной фосфатазы также была
достоверно больше у животных, которые не принимали пробиотик на основе
штамма Enterococcus Faecium L-3 на 35,0%, чем у телят подопытной группы.
В месячном возрасте у телят контрольной группы был достоверно выше
(P≤0,01) уровень мочевины в сыворотке крови, что также указывает на
дегидратацию организма, вследствие диареи.
При оценке активности аланинаминотрансферазы (АлАТ) отмечена
тенденция к повышенному ее содержанию у животных контрольной группы на
всем протяжении эксперимента. Так в 14-ти дневном возрасте активность АлАТ
была достоверно больше на 67,0%, чем у телят, которые принимали
пробиотический препарат.
В 30-ти дневном возрасте данный показатель также был достоверно выше
у телят контрольной группы на 45,0%.
И к 45-дню эксперимента АлАТ была достоверно выше у телят, не
принимавших препарат, чем у телят с пробиотической поддержкой на 47,0%.
Сходныерезультатыбылииприоценкеактивности
аспартатаминотрансферазы (АсАТ). Так в двухнедельном возрасте активность
АсАТ была достоверно выше на 40,0% у животных контрольной группы, чем у
телят с пробиотической поддержкой.
К 30-ти дневному возрасту этот показатель был достоверно выше на
44,0% у животных без пробиотической поддержки.
Тенденция к повышенному содержанию АсАТ в сыворотке крови телят
контрольной группы сохранялась и к 45-ти дневному возрасту, но разница была
не достоверна (P>0,05).
Следует отметить, что при исследовании таких показателей как:
креатинин и холестерин во всех возрастных группах достоверных отличий не
было (P>0,05). Эти результаты подтверждается данными, полученными А. П.,
Курдеко, и соавт., (2014); Л. А., Морозовой, и соавт., (2014); А. А., Воиновой, и
соавт., (2015).
Кроме того, важно отметить, что при увеличении числа условно-
патогенной микрофлоры у телят 14 – и 30 – ти дневного возраста, которые не
принимали пробиотик, такие показатели крови как: количество эритроцитов,
уровень гемоглобина, гематокритная величина, мочевина, щелочная фосфатаза,
АсАТ, билирубин были достоверно больше, чем у животных, которым
задавался данный препарат. Это, в свою очередь говорит о сильной прямой
взаимосвязи этих показателей.
В процессе эксперимента было установлено, что у телят 14-ти дневного
возраста, получавших пробиотик, было достоверно меньше количество общей
бактериальной массы на 14,0%, чем в контрольной группе. Уровень общей
бактериальной массы у телят месячного возраста, принимавших препарат,
также был достоверно ниже на 19,0%, чем у животных контрольной группы,
что, очевидно, свидетельствует об увеличении числа условно-патогенной
микрофлоры. Количество Escherichia coli у телят подопытной группы 14-ти
дневного возраста был достоверно меньше на 19%, чем у телят контрольной
группы. Уровень Bacteroides fragilis group в группе телят с пробиотической
поддержкой 14-ти дневного возраста был достоверно меньше на 14,0%, чем в
группе, не принимающей пробиотик. В подопытной группе животных 30-ти
дневного возраста также было достоверно меньше Bacteroides fragilis на 18,5%,
чем в контрольной группе телят (рисунки 5-6).

1211,3911,39
9,819,83
8,95 9,46
7,978,09
87,45
6,46
0
ОбщаяBifidobacteriumEscherichia coliBacteroides fragilis Faecalibacterium
бактериальнаяspp.groupprausnitzii
масса

Подопытная (14 дней)Контрольная 14 дней

Рисунок 5 – Показатели микрофлоры кишечника (LgКОЕ/г) телят в 14-ти дневном возрасте.
12,1212,12
9,879,87
8,39 8,207,98 8,49
6,84 6,98
0
ОбщаяBifidobacteriumEscherichia coliBacteroides fragilis Faecalibacterium
бактериальнаяspp.groupprausnitzii
масса

Подопытная 30 днейКонтрольная 30 дней
Рисунок 6 – Показатели микрофлоры кишечника (LgКОЕ/г) телят в месячном возрасте.

При проведении расчёта экономической эффективности было
определено, что терапия одного телёнка по принятой в хозяйстве схеме в
среднем длится в течение 5,2±0,5 дней и общая стоимость составляет 1043,17
рублей, что выше затрат на профилактику энтерита, которая проводилась в
течение 45 дней с использованием пробиотика на основе штамма Enterococcus
Faecium L-3 на 233,17 рублей. На лечение телят этим же пробиотическим
препаратом было затрачено меньше средств, чем в контрольной группе
животных, которое в среднем длилось в течение 2,5±0,3 дней на 998,17 рублей.
Также стоит отметить, что экономическая эффективность профилактических
мероприятий при энтерите телят при использовании пробиотика на основе
штамма Enterococcus Faecium L-3 составила 1,61 руб. на 1 руб. затрат, а
лечебных мероприятий – 35,23 руб. на 1 руб. затрат.
Следовательно, положительное действие пробиотического препарата на
организмтелятможносчитатьдоказанным,аиспользование
лиофилизированной формы пробиотического препарата в лечебных и
профилактических целях является эффективным.
Таким образом, регулярное скармливание лиофильно высушенной формы
пробиотика на основе штамма бактерий Enterococcus Faecium L-3 телятам
раннего постнатального периода способствует более эффективному лечению и
профилактике энтерита у животных, большей устойчивости к желудочно-
кишечным расстройствам, созданию благоприятных условий для развития
нормальной микрофлоры и не допущению усиленного развития в кишечнике
условно-патогенной микрофлоры.
Заключение
В результате настоящей работы была проведена комплексная диагностика
желудочно-кишечных расстройств у 295 телят черно-пестрой породы,
сформированы группы животных, куда входили телята, которым задавали
пробиотический препарат и телята, которым не давали пробиотик. Проведены
лечебные мероприятия для телят, у которых был установлен энтерит, а также
проведены профилактическиемероприятиясцелью недопущения
распространения энтерита у телят раннего постнатального периода.
Выводы
Одной из главных задач любой отрасли животноводства является
получение и сохранение здорового молодняка. Однако, здоровье животных
всех возрастных групп и, в первую очередь, молодняка может быть ослаблено
из-за условий содержания, кормления и эксплуатации животных, а также
широкого использования в животноводстве антибиотиков на протяжении
последних десятилетий, что приводит к дефициту в организме животных
симбиотической микрофлоры, которая участвует в переваривании корма,
синтезе аминокислот и витаминов, положительно влияет на иммунитет, а также
оказывает антагонистическое действие на патогенную и условно патогенную
микрофлору.
Оптимальным путем решения проблемы, связанной с болезнями
желудочно-кишечного тракта телят, в том числе и энтерита, является
включение пробиотиков в комплекс лечебно – профилактических мероприятий
по предотвращению данных заболеваний.
Проведённые исследования показали эффективность пробиотического
препарата на основе штамма Enterococcus Faecium L-3, позволяющего
эффективно лечить и профилактировать энтериты молодняка крупного
рогатого скота. И на основе этого сделаны следующие выводы:
1. Признаки энтерита у телят в хозяйстве, где проводились опыты,
отмечались у 80,0% исследуемого поголовья. Наиболее частыми причинами у
телят были: нарушение режима кормления и содержания и, как следствие,
снижение резистентности у телят раннего постнатального периода.
2. Клинически энтерит у заболевших телят проявляется общим
угнетенным состоянием, животные чаще лежат, не обращают внимание на
окружающие, периодически вздрагивают, обнюхивают живот. Наблюдаются
усиление перистальтики кишечника, при аускультации кишечника – громкое и
постоянное урчание, учащение актов дефекации, каловые массы бесформенные,
с резким кисло-гнилостным запахом, жидкой консистенции, цвет фекалий
имеет желтый цвет различной интенсивности. Область хвоста и тазовых
конечностей испачканы фекалиями. Сфинктер анального отверстия при
тяжелом течении заболевания расслаблен.
3. В морфологическом составе крови из-за развивающихся диареи и
обезвоживания организма у больных телят отмечается выраженный
эритроцитоз, гиперхромия, повышение гематокритной величины. В
биохимическом составе крови у телят, больных энтеритом, отмечается
достоверно высокие показатели щелочной фосфатазы, билирубина, АлАТ и
АсАТ.
4. Применение пробиотического препарата на основе штамма бактерий
Enterococcus Faecium L-3 снижает заболеваемость у телят с 80,0% до 5,0%.
Телята, принимавшие пробиотик, болели в легкой форме, продолжительность
болезни в среднем составляет 2,5±0,3 дня.
5. Применение пробиотика на основе штамма Enterococcus Faecium L-3
с профилактической целью энтерита оказывает благоприятное действие на
морфологические и биохимические показатели крови, способствует
повышению показателей специфической и неспецифической защиты
организма. Установлено положительное влияние пробиотического препарата на
показатели неспецифической защиты во всех возрастных группах телят,
которое проявлялось повышением бактерицидной активности сыворотки крови
к концу исследования на 61,0% и лизоцимной активности сыворотки крови на
34%.
6. Использование пробиотика в течение 45 дней для профилактики
энтерита у телят способствует более высоким показателям иммунитета у телят,
принимавших препарат, чем у телят контрольной группы. Так, уровень БАСК
выше на 61,0%, ЛАСК на 34,0%, IgA на 35,0%, IgM на 22,0%, IgG на 63,0%.
7. Установлено, что в составе микрофлоры кишечника у телят раннего
постнатального периода с пробиотической поддержкой условно-патогенной
микрофлоры содержится в меньшем количестве. У телят контрольной группы с
возрастом количество условно-патогенной микрофлоры увеличивалось
естественным образом, что способствовало развитию желудочно-кишечных
расстройств. Это указывает на то, что пробиотик создает благоприятные
условия для развития представителей нормальной флоры и не позволяет
усиленно развиваться условно-патогенной микрофлоре.
8. Телята, которые не принимали пробиотический препарат,
существенно отставали по массе тела от животных подопытной группы. Телята
с пробиотической поддержкой в 45-ти дневном возрасте весили на 13% больше
(Р<0,01), чем телята контрольной группы. Среднесуточные привесы животных, не принимающих пробиотический препарат, в первый месяц жизни были на 24,0% меньше по сравнению с животными, которые принимали препарат, а во второй месяц жизни – на 31,0% (P≤0,05). 9. Экономическая эффективность профилактических мероприятий при энтерите телят при использовании пробиотика на основе штамма Enterococcus Faecium L-3 составила 1,61 руб. на 1 руб. затрат, а лечебных мероприятий - 35,23 руб. на 1 руб. затрат. Практические предложения 1. В комплексе терапевтических мероприятий при энтеритах телят различной этиологии рекомендуем применять лиофилизированную форму пробиотика на основе штамма Enterococcus Faecium L-3 внутрь 1 раз в день по 0,5 грамм с кормом 5 дней. 2. В комплексе профилактических мероприятий энтерита телят различной этиологии рекомендуем применять лиофильно высушенную форму пробиотика на основе штамма Enterococcus Faecium L-3 внутрь 1 раз в день по 0,5 грамм с кормом до 45-ти дневного возраста. 3. Полученные результаты настоящего исследования могут быть использованы при составлении учебных пособий, научных статей и методических указаний, касающихся заболеваний желудочно-кишечного тракта телят, а также использовать в учебном процессе, в том числе при проведении лабораторно-практических занятий и чтении лекций, обучающихся по специальности 36.05.01 «Ветеринария». Перспективы дальнейшей разработки темы Данное исследование имеет важное научно-практическое значение для решения проблемы, связанной с заболеваниями желудочно-кишечного тракта молодняка животных. Опираясь на полученные данные об эффективности использования лиофилизированной формы пробиотика на основе штамма бактерий Enterococcus Faecium L-3 в качестве лечебного и профилактического средства необходимо продолжать дальнейшую работу в этом направлении, изучая влияние препарата, как на телят, так и на молодняк других сельскохозяйственных животных.